LEISTUNGSVERZEICHNIS
Version: 0.4 / 02.2017
BLUTBILD
Blutbild
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Methode:
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Opto-photometrische Messung
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Material:
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3 ml EDTA-Blut
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Präanalytik:
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EDTA-Monovette nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen und bei Raumtemperatur lagern. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
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Referenzbereiche (>= 18 Jahre):
*Referenzbereiche für Kinder: siehe Befundbericht
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Indikation:
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Anämien, Infektionen, Intoxikationen, Kollagenosen, Leukämien und andere hämatologische Systemerkrankungen, maligne Tumoren, Kontrolle von Therapien (Bestrahlung, Chemotherapie) Ermittlung der Leukozyten und Lymphozytenzahl zur Berechnung der Absoluten Lymphozyten-subpopulationen mittels Durchflusszytometrie.
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Durchführung:
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täglich
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LYMPHOZYTEN-DIFFERENZIERUNG (Immunstatus)
Immunphänotypisierung von Lymphozyten
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Methode:
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Durchflusszytometrie
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Material:
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7 ml EDTA-Blut (Lagerung bei 20-25°C)
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Präanalytik:
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EDTA-Monovette nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen und bei Raumtemperatur lagern.
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Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden. Zur Ermittlung der quantitativen Zellpopulationen ist die gleichzeitige Bestimmung der Leukozyten erforderlich (s. Blutbild).
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Indikation:
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Unser Hauptanwendungsgebiet ist die Bestimmung bzw. Charakterisierung von Lymphozytensubpopulationen zur Verlaufs- und Therapiekontrolle einer HIV-Infektion.
Ein Immunstatus beinhaltet T-Lymphozyten, T-Helferzellen, Zytotoxische T-Zellen, B-Lymphozyten und Natürliche Killerzellen.
Ergänzende Analysen beinhalten beispielsweise Aktivierungsmarker.
Weiterhin ist die Bestimmung u. a. indiziert bei Tumorerkrankungen, Autoimmunerkrankungen, lymphoproliferativen Erkrankungen.
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Durchführung:
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täglich
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HIV (HUMANES IMMUNDEFIZIENZ –VIRUS):
HIV-1/2 Suchtest (Anti-HIV 1/2 und p24-Antigen)
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
Hinweis: ein positiver Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (HIV PCR oder Westernblot*) überprüft werden.
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Verdacht auf eine HIV Infektion
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Erregermeldung:
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positive bestätigte Ergebnisse werden durch das Untersuchungslabor anonym an das Robert Koch Institut gemeldet
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Inkubationszeit:
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HIV-Antikörper lassen sich in der Regel 4-5 Wochen nach dem Infektionsrisiko nachweisen.
In manchen Fällen kommt es zur verzögerten Antikörperbildung.
HIV-Antigene sind 1 bis 3 Wochen vor der Serokonversion nachweisbar.
Sensitivster Marker ist die HIV Viruslastbestimmung.
Kinder von HIV-positiven Müttern sind bei der Geburt immer seropositiv.
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Durchführung:
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täglich.
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HIV-1 Viruslastbestimmung (quantitative HIV-PCR)
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Methode:
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quantitative real-time PCR
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Messbereich:
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40 – 10.000.000 Kopien/ml
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Indikation:
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Überwachung der Krankheitsprogression oder Therapieüberwachung bei HIV-Infektion
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Behandlungsziel:
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Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 50 Kopien/ml
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Häufigkeit der Viruslastbestimmung:
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Kontrollmessungen alle drei bis vier Monate.
Kürzere Abstände bei Behandlungsentscheidungen.
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Durchführung:
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täglich
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HIV-2 Viruslastbestimmung* (quantitative HIV-PCR)
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Methode:
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quantitative Real-time PCR
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Material:
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7ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur.
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Messbereich:
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100 – 1.000.000 Kopien/ml
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Indikation:
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Überwachung der Krankheitsprogression oder Therapieüberwachung bei HIV-2 Infektion
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Behandlungsziel:
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Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze
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Häufigkeit der Viruslastbestimmung:
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Kontrollmessungen alle drei bis vier Monate.
Kürzere Abstände bei Behandlungsentscheidungen.
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Durchführung:
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bei Bedarf (*)
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HIV-1 genotypische Resistenzbestimmung
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Methode:
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RT-PCR, Sequenzierung n. Sanger
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 100 HIV-1 RNA Kopien/ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Genbereiche:
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Protease und Reverse Transkriptase
Integrase
gp41
V3-loop im gp120
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Indikation:
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Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung
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Behandlungziel:
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Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 50 Kopien/ml
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Anforderung:
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bei Bekanntwerden der Infektion oder vor initialem Therapiebeginn, nach Therpieversagen. Mit speziellem Anforderungsschein.
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Durchführung:
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zwei bis dreimal wöchentlich
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Formular:
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—> unter Servicebereich <—–
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HIV-1 Subtypbestimmung
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Methode:
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RT-PCR, Sequenzierung n. Sanger
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 100 Kopien / ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Lagerung:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Genbereich:
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Protease und Bereiche der Reversen Transkriptase
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Indikation:
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Bestimmung der diversen HIV-1 Subtypen (A, B,C D, F, G, H, J, K und CRFs wie AE, AG, …)
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Behandlungsziel:
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Langanhaltende Suppression der Viruslast
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Anforderung:
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Bei Bedarf
Die genotypische Subtypbestimmung bei HIV ist zurzeit keine GKV-Leistung
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Hinweis:
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Wird automatisch bei der Resistenz-analyse durchgeführt und angegeben
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Genotypische HIV-Tropismusanalyse bei nachweisbarer Viruslast
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Methode:
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RT-PCR, Sequenzierung n. Sanger
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 100 Kopien / ml Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Messbereich:
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gp120 V3-loop
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Indikation:
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Bestimmung des Tropismus (CCR5, CXC-R4, dual oder misch-trop)
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Behandlungsziel:
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Langanhaltende Suppress-ion der Viruslast
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Anforderung:
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zeitnah vor Therapiebeginn oder bei Therapieversagen
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Durchführung:
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zweimal wöchentlich
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Formular:
|
—> unter Servicebereich <—–
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Genotypische HIV-Resistenz- oder Tropismusanalyse aus proviraler DNA
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Methode:
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PCR, Sequenzierung nach Sanger
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Material:
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7 ml EDTA-Blut (KEIN EDTA-Plasma!)
Keine nachweisbare Viruslast oder Viruslast <100 Kopien/ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
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Messbereich:
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entspricht dem Bereich der viralen Messung
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Indikation:
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Bestimmung der Resistenz oder des Tropismus
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Behandlungsziel:
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Langanhaltende Suppress-ion der Viruslast
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Anforderung:
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zeitnah vor Therapiebeginn oder bei Therapieversagen
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Durchführung:
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zweimal wöchentlich
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Formular:
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—> unter Servicebereich <—–
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HEPATITIS A VIRUS:
HAV-Antikörper (Anti HAV)
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Verdacht auf e. akute Hepatitis A
Überprüfung des Impfschutzes nach Hepatits A Impfung
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Erregermeldung:
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Für die akute Hepatitis A besteht nach IfSG eine Meldepflicht
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Inkubationszeit:
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Anti-HAV-Antikörper sind in der Regel nach 12 – 40 Tage nachweisbar.
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Hinweis:
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bei einem positivem Anti-HAV (IgM/IgG gesamt) Suchtest sollte der Verdacht auf eine Akutinfektion durch die Bestimmung des HAV-IgM bestätigt werden.
IgM- Antikörper verschwinden i. A. nach drei bis sechs Monaten, während IgG Antikörper meist lebenslang persistieren und eine Immunität anzeigen
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Durchführung:
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wöchentlich
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HAV RNA Nachweis* (qualitative HAV-PCR)
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Methode:
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PCR
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma. Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung oder Stuhlröhrchen
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren
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Messbereich:
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negativ
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Indikation:
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Verdacht auf e. akute Hepatitis A
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Erregermeldung:
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Für die akute Hepatitis A besteht nach IfSG eine Meldepflicht
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Durchführung:
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nach Bedarf (*)
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HEPATITIS B VIRUS:
Anti HBc lgM und lgG
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Verdacht auf eine frische, chronische o. ausgeheilte Hepatitis B Infektion
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Erregermeldung:
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s. anti HBc lgM
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Inkubationszeit:
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Nachweis frühestens eine Woche nach Übertragung
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Hinweis:
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langjährige (bis lebenslange) Persistenz.
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Durchführung:
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wöchentlich
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Anti-HBc IgM*
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Verdacht auf eine akute Hepatitis B Infektion (*)
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Erregermeldung:
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Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis von Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet
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Inkubationszeit:
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Der Nachweis von HBc-IgM-AK spricht in der Regel für eine kürzliche HBV-Infektion <6 Monate.
Bei akuter HBV-Infektion sind hohe HBc-IgM-Titer zu erwarten. Persistenz bis zu 12 Monaten.
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Hinweis:
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Persistenz bis zu 12 Monaten. In geringerer Konzentration können HBc-IgM-AK auch bei Exazerbation einer chronischen HBV-Infektion auftreten
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Durchführung:
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wöchentlich
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Anti-HBe*
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Infektionsstatus bei HBV-Infektion, Verlaufskontrolle bei HBV-Infektion
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Hinweis:
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Wenn Anti-HBe nicht innerhalb von 6 Monaten nach einer Infektion im Blut nachweisbar ist, deutet dies auf einen chronischen Verlauf der Infektion hin. Die HBe-Serokonversion stellt ein Zielkriterium der antiviralen Therapie dar. Achtung: Bei Infektion mit seltenen HBV-Escape-Mutanten kann kein Anti-HBe gebildet werden
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Durchführung:
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wöchentlich(*)
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Anti-HBs
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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entfällt
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Indikation:
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Durchgemachte HBV-Infektion, Impfstatus
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Hinweis:
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zusammen mit Anti-HBc Parameter für eine immunologische Kontrolle ohne vorhandenes Anti-HBc meist Parameter für Impfschutz. Beginnende Immunität nach einer Impfung liegt bei einem Messwert von >10 IU/ml vor.
> 100 U/ml => Impfschutz vorhanden
< 100 U/ml => Auffrischung empfohlen
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Durchführung:
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wöchentlich
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HBs-Antigen* (qualitativ)*
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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negativ
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Indikation:
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Akute oder chronische HBV-Infektion, Mutterschaftsvorsorge
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Erregermeldung:
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Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis von Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet
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Inkubationszeit:
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Nachweis etwa 1-10 Wochen nach Übertragung. Frühseter diagnostischer Marker
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Hinweis:
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Bei Persistenz > 6 Monate liegt eine chronische Infektion vor Der Verlust von HBs-Antigen spricht in Verbindung mit dem Auftreten von HBs- AK für eine ausgeheilte (immunologisch kontrollierte) Infektion.
Zur Beurteilung der Virusaktivität sowie hinsichtlich der Therapieindikation ist die Untersuchung auf HBV-DNA zu empfehlen. 5-10 % der HBV-Infektionen sind HBs-Antigen negativ!
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Durchführung:
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wöchentlich(*)
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HBe-Antigen*
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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Referenzbereich:
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negativ
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Indikation:
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Infektionsstatus bei HBV-Infektion, Verlaufskontrolle bei HBV-Infektion, Therapiemonitoring, Therapieprognose
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Inkubationszeit:
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Nachweis etwa 1-10 Wochen nach Übertragung.
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Hinweis:
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HBe-Antigen weist in der Regel auf eine hohe Virusreplikation hin.
Fehlendes HBe-Antigen schließt jedoch eine hohe Replikationsrate nicht aus (Präcore-Mutation).
Achtung: Bei Infektion mit seltenen HBV-Escape-Mutanten kann kein HBe-Antigen nachgewiesen werden.
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Durchführung:
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wöchentlich(*)
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HBV Viruslastbestimmung (quantitative HBV-PCR)
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Methode:
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quantitative Real-time PCR
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren
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Referenzbereich:
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negativ
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Messbereich:
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10 – 1.000.000.000 IU/ml
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Indikation:
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Differentialdiagnose akute oder ausgeheilte Hepatitis B; Therapiemarker
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Erregermeldung:
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Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis von Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet. Diagnosemeldung erfolgt durch den behandelnden Arzt.
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Behandlungsziel:
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Serokonversion oder langanhaltende Suppression der Viruslast.
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Hinweis:
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Viruslastbestimmung: bei positivem Antikörpernachweis, vor Beginn einer Therapie, 4 und 12 Wochen nach Therapiebeginn und anschließend in 3 Monatsabständen bis zur etwaigen langanhaltenden Serokonversion.
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Durchführung:
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wöchentlich
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HBV genotypische Resistenzbestimmung
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Methode:
|
PCR, Sequenzierung nach Sanger
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 300 HBV-DNA IU/ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Genbereich:
|
Polymerase
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Indikation:
|
Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung
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Behandlungsziel:
|
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 10 IU/ml
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Hinweis:
|
Anforderung: nach Therapieversagen, bei Verdacht auf primärresistenten Viren
Die genotypische Resistenzbestimmung bei HBV ist zurzeit keine GKV-Leistung
Antrag auf Kostenübernahme bei der KK erforderlich!
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Durchführung:
|
auf Anfrage
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HBV Genotypisierung
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Methode:
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Realtime PCR
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Material:
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7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 300 HBV-DNA IU/ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Messbereich:
|
Polymerasegen
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Indikation:
|
Bestimmung des Genotyp von Hepatitis B (A, B,C, D, …
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Behandlungsziel:
|
Langanhaltende Suppression der Viruslast, Serokonversion
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Hinweis:
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Anforderung: vor Therapiebeginn (insbesondere mit Interferon)
Die Genotypisierung bei HBV ist zurzeit keine GKV-Leistung
Antrag auf Kostenübernahme bei der KK erforderlich!
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|
Durchführung:
|
auf Anfrage
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HEPATITIS D VIRUS:
HDV-Antikörper (Anti HDV)*
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Methode:
|
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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|
Material:
|
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
|
|
Referenzbereich:
|
entfällt
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Indikation:
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bei jeder Hepatitis-B-Neudiagnose, bei bisher fehlender Testung bei bekannter HBV-Infektion sowie bei Exazerbation einer chronischen Hepatitis B.
Verdacht auf eine Infektion mit Hepatitis D
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Erregermeldung:
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namentliche Labor-Meldepflicht gem. IfSG bei direktem und indirektem Erregernachweis!
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Hinweis:
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Beim Hepatitis-D-Virus handelt es sich um ein defektes Virus: Für die Produktion infektiöser Viruspartikel ist das Hepatitis-B-Virus-Hüllprotein (HBs-Antigen) erforderlich, so dass eine HDV-Infektion ausschließlich in Verbindung mit einer HBV-Infektion vorkommt. Ein positiver Anti-HDV-Antikörper Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (Direktnachweis über HDV-RNA) überprüft werden.
Der direkte Erregernachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen aktiver und ausgeheilter HDV-Infektion.
Bei negativem Virusnachweis sollte gegebenenfalls die Untersuchung im Abstand von 3-6 Monaten untersucht werden.
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Durchführung:
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wöchentlich(*)
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HEPATITIS C VIRUS:
HCV-Antikörper Nachweis
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Methode:
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ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay)
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Material:
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1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C)
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|
Referenzbereich:
|
entfällt
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Indikation:
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akute, chronische oder früher abgelaufene Infektion
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Erregermeldung:
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positive bestätigte Erstbe-funde werden durch das Untersuchungslabor an das zuständige Gesundheitsamt gemeldet.
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Inkubationszeit:
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HCV-Antikörper werden in der Regel 6 – 9 Wochen, in seltenen Fällen erst 6 Monaten nach der Infektion nachweisbar.
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Hinweis:
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ein positiver Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (Direktnachweis über HCV-RNA) überprüft werden.
Der direkte Erregernachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen aktiver und ausgeheilter HCV-Infektion.
Bei negativem Virusnachweis sollte gegebenenfalls die Untersuchung im Abstand von 3-6 Monaten untersucht werden.
Bei Neugeborenen ist zu beachten, dass maternale HCV-AK bis zu 18 Monate nachweisbar bleiben können.
Der Ausschluss einer vertikalen Transmission erfolgt mittels HCV-PCR.
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Durchführung:
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2-3 wöchentlich
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HCV Viruslastbestimmung (quantitative HCV-PCR)
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Methode:
|
quantitative Real-time PCR
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Material:
|
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
|
|
Präanalytik:
|
EDTA-Blut, Lagerung bei RT.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren
|
|
Referenzbereich:
|
negativ
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Messbereich:
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12 – 100.000.000 IU/ml (Umrechnungsfaktor: 1 IU ≈ 2,6 Kopien/ml)
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Indikation:
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Differentialdiagnose akute oder ausgeheilte Hepatitis C; aktive HCV, Therapiemarker, neonatale Infektion
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Erregermeldung:
|
namentliche Meldung durch das Labor an das Gesundheitsamt, wenn keine chronische Infektion bekannt ist.
Diagnosemeldung erfolgt durch den behandelnden Arzt.
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Inkubationszeit:
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HCV-RNA lässt sich in der Regel 2 – 4 Wochen nach dem Infektionsrisiko nachweisen.
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|
Hinweis:
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Behandlungsziel: keine nachweisbare HCV-RNA (Eradikation). Deshalb soll die HCV RNA vor Therapie-beginn, unter Therapie und bei Therapieende durchgeführt werden. Von einer Heilung ist auszugehen, wenn drei Monate nach Therapieende keine HCV-RNA mehr nachweisbar ist.
Bei serologischem Nachweis einer HCV-Infektion und negativer HCV-PCR sollte aufgrund der Möglichkeit einer diskontinuierlichen Replikationsaktivität eine Kontrolluntersuchung nach 6-12 Monaten durchgeführt werden.
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|
Durchführung:
|
täglich
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HCV Genotypisierung
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Methode:
|
PCR, Sequenzierung nach Sanger
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Material:
|
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma
Nachweisbare Viruslast!
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
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|
Präanalytik:
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EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
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Messbereich:
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NS5A / NS5B
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Indikation:
|
Bestimmung des Genotyp von Hepatitis C (1a, 1b, 2, 3, 4, 5, 6)
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Behandlungsziel:
|
Heilung. Die HCV-Geno-typisierung spielt eine wichtige Rolle bei der
Therapieplanung (Therapiedesign, Therapiedauer).
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Hinweis:
|
Anforderung: vor Therapiebeginn. Bei Verdacht auf Reinfektion
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Durchführung:
|
wöchentlich
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HCV genotypische Resistenzbestimmung
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Methode:
|
PCR, Sequenzierung nach Sanger
|
|
Material:
|
7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma
Minimale Viruslast: 100 HCV-RNA IU/ml
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung
|
|
Präanalytik:
|
EDTA-Blut: Lagerung bei RT
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren
|
|
Genbereich:
|
NS3A4, NS5A, NS5B
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Indikation:
|
Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung
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Behandlungsziel:
|
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 12 IU/ml mit Ausheilung.
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Anforderung:
|
Nach Therapieversagen; bei Verdacht auf primärresistente Viren; mit speziellem Anforderungsschein.
Die genotypische Resistenzbestimmung bei HCV ist zurzeit keine GKV-Leistung
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Durchführung:
|
auf Anfrage
|
Informationen zu anderen Parametern erhalten Sie auf Anfrage
(info@labor-knechten.de)
* Partnerlabor
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