LEISTUNGSVERZEICHNIS
Version: 0.6 / 10.2019
BLUTBILD
Blutbild
| Methode: |
Optische Messung / Durchflusszytometrie |
| Material: |
3 ml EDTA-Blut |
| Präanalytik: |
EDTA-Monovette nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen und bei Raumtemperatur lagern. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden. |
| Referenzbereiche (>= 18 Jahre): |
Referenzbereiche für Kinder: siehe Befundbericht |
| Indikation: |
Anämien, Infektionen, Intoxikationen, Kollagenosen, Leukämien und andere hämatologische Systemerkrankungen, maligne Tumoren, Kontrolle von Therapien (Bestrahlung, Chemotherapie), Ermittlung der Leukozyten und Lymphozytenzahl zur Berechnung der absoluten Lymphozyten-subpopulationen mittels Durchflusszytometrie. |
| Durchführung: |
täglich |
LYMPHOZYTEN-DIFFERENZIERUNG (Immunstatus)
Immunphänotypisierung von Lymphozyten
| Methode: |
Durchflusszytometrie |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut (Lagerung bei 20-25°C) |
| Präanalytik: |
EDTA-Monovette nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen und bei Raumtemperatur lagern. |
| Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden. Zur Ermittlung der quantitativen Zellpopulationen ist die gleichzeitige Bestimmung der Leukozyten erforderlich (s. Blutbild). |
| Referenzbereich |
 |
| Indikation: |
Unser Hauptanwendungsgebiet ist die Bestimmung bzw. Charakterisierung von Lymphozytensubpopulationen zur Verlaufs- und Therapiekontrolle einer HIV-Infektion.
Ein Immunstatus beinhaltet T-Lymphozyten, T-Helferzellen, Zytotoxische T-Zellen, B-Lymphozyten und Natürliche Killerzellen. Ergänzende Analysen beinhalten beispielsweise Aktivierungsmarker. Weiterhin ist die Bestimmung u. a. indiziert bei Tumorerkrankungen, Autoimmunerkrankungen, lymphoproliferativen Erkrankungen. |
| Durchführung: |
täglich |
HIV (HUMANES IMMUNDEFIZIENZ –VIRUS):
HIV-1/2 Suchtest (Anti-HIV 1/2 und p24-Antigen)
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Verdacht auf eine HIV Infektion |
| Erregermeldung: |
Positive bestätigte Ergebnisse werden durch das Untersuchungslabor anonym an das Robert Koch Institut gemeldet. |
| Inkubationszeit: |
HIV-Antikörper lassen sich in der Regel 4-5 Wochen nach dem Infektionsrisiko nachweisen.
In manchen Fällen kommt es zur verzögerten Antikörperbildung.
HIV-Antigene sind 1 bis 3 Wochen vor der Serokonversion nachweisbar.
Sensitivster Marker ist die HIV Viruslastbestimmung.
Hinweis: ein positiver Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (HIV PCR oder Western Blot) überprüft werden. |
| Durchführung: |
täglich. |
HIV-1 Viruslastbestimmung (quantitative HIV-PCR)
| Methode: |
quantitative real-time PCR |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren |
| Messbereich: |
40 – 10.000.000 Kopien/ml |
| Indikation: |
Überwachung der Krankheitsprogression oder Therapieüberwachung bei HIV-Infektion |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 50 Kopien/ml |
| Häufigkeit der Viruslastbestimmung: |
Kontrollmessungen alle drei bis vier Monate.
Kürzere Abstände bei Behandlungsentscheidungen. |
| Durchführung: |
täglich |
HIV-2 Viruslastbestimmung* (quantitative HIV-PCR)
| Methode: |
quantitative Real-time PCR |
| Material: |
7ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Messbereich: |
100 – 1.000.000 Kopien/ml |
| Indikation: |
Überwachung der Krankheitsprogression oder Therapieüberwachung bei HIV-2 Infektion |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze |
| Häufigkeit der Viruslastbestimmung: |
Kontrollmessungen alle drei bis vier Monate.
Kürzere Abstände bei Behandlungsentscheidungen. |
| Durchführung: |
bei Bedarf (*) |
HIV-1 genotypische Resistenzbestimmung bei nachweisbarerViruslast aus EDTA-Plasma
| Methode: |
RT-PCR, Sequenzierung n. Sanger o. wahlweise Ultra-Deep-Sequenzierung (NGS) |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung.
Minimale Viruslast: 100 HIV-1 RNA Kopien/ml |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren |
| Genbereiche: |
Protease und Reverse Transkriptase, Integrase, gp41, V3-loop im gp120
|
| Indikation: |
Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung |
| Behandlungziel: |
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 50 Kopien/ml |
| Anforderung: |
bei Bekanntwerden der Infektion oder vor initialem Therapiebeginn, nach Therpieversagen. Mit speziellem Anforderungsschein. |
| Durchführung: |
ein bis zweimal wöchentlich |
| Formular: |
Siehe Menüpunkt: Formulare |
Genotypische HIV-Tropismusanalyse bei nachweisbarer Viruslast aus EDTA-Plasma
| Methode: |
Sanger-Sequenzierung. o. wahlweise Ultra-Deep-Sequenzierung (NGS) |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren |
| Messbereich: |
gp120 V3-loop |
| Indikation: |
Bestimmung des Tropismus (CCR5, CXC-R4) |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Suppression der Viruslast |
| Anforderung: |
zeitnah vor Therapiebeginn oder bei Therapieversagen |
| Durchführung: |
Ein- bis zweimal wöchentlich |
| Formular: |
Siehe Menüpunkt: Formulare |
Genotypische HIV-Resistenz- oder Tropismusanalyse aus proviraler DNA (PBMCs)
| Methode: |
Sanger-Sequenzierung |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut (KEIN EDTA-Plasma!).
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei Raumtemperatur.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden |
| Messbereich: |
entspricht dem Bereich der viralen Messung |
| Indikation: |
Bestimmung der Resistenz oder des Tropismus |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Suppress-ion der Viruslast |
| Anforderung: |
zeitnah vor Therapiebeginn oder bei Therapieversagen |
| Durchführung: |
Ein- bis zweimal wöchentlich |
| Formular: |
Siehe Menüpunkt: Formulare |
HEPATITIS A VIRUS:
HAV-Antikörper (Anti HAV)
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Verdacht auf eine akute Hepatitis A oder
Überprüfung des Impfschutzes nach einer Hepatitis A Impfung |
| Erregermeldung: |
Für die akute Hepatitis A besteht nach IfSG eine Meldepflicht |
| Inkubationszeit: |
Anti-HAV-Antikörper sind in der Regel nach 12 – 40 Tage nachweisbar. |
| Hinweis: |
Bei einem positivem Anti-HAV (IgM/IgG gesamt) Suchtest sollte der Verdacht auf eine Akutinfektion durch die Bestimmung des HAV-IgM bestätigt werden. IgM- Antikörper verschwinden i. A. nach drei bis sechs Monaten, während IgG Antikörper meist lebenslang persistieren und eine Immunität anzeigen |
| Durchführung: |
wöchentlich |
HAV RNA Nachweis* (qualitative HAV-PCR)
| Methode: |
PCR |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma. Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung oder Stuhlröhrchen |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden. EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren |
| Messbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Verdacht auf eine akute Hepatitis A |
| Erregermeldung: |
Für die akute Hepatitis A besteht nach IfSG eine Meldepflicht |
| Durchführung: |
nach Bedarf (*) |
HEPATITIS B VIRUS:
Anti HBc lgM und lgG
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Verdacht auf eine frische, chronische oder ausgeheilte Hepatitis B Infektion |
| Erregermeldung: |
s. anti HBc lgM |
| Inkubationszeit: |
Nachweis frühestens eine Woche nach Übertragung |
| Hinweis: |
langjährige (bis lebenslange) Persistenz. |
| Durchführung: |
wöchentlich |
Anti-HBc IgM*
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Verdacht auf eine akute Hepatitis B Infektion (*) |
| Erregermeldung: |
Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis von Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet. |
| Inkubationszeit: |
Der Nachweis von HBc-IgM-AK spricht in der Regel für eine kürzliche HBV-Infektion <6 Monate.
Bei einer akuten HBV-Infektion sind hohe HBc-IgM-Titer zu erwarten. Persistenz bis zu 12 Monaten. |
| Hinweis: |
Persistenz bis zu 12 Monaten. In geringerer Konzentration können HBc-IgM-AK auch bei Exazerbation einer chronischen HBV-Infektion auftreten. |
| Durchführung: |
wöchentlich |
Anti-HBe*
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Infektionsstatus bei HBV-Infektion, Verlaufskontrolle bei HBV-Infektion |
| Hinweis: |
Wenn Anti-HBe nicht innerhalb von 6 Monaten nach einer Infektion im Blut nachweisbar ist, deutet dies auf einen chronischen Verlauf der Infektion hin. Die HBe-Serokonversion stellt ein Zielkriterium der antiviralen Therapie dar. Achtung: Bei Infektion mit seltenen HBV-Escape-Mutanten kann kein Anti-HBe gebildet werden. |
| Durchführung: |
wöchentlich(*) |
Anti-HBs
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Durchgemachte HBV-Infektion, Impfstatus |
| Hinweis: |
zusammen mit Anti-HBc Parameter für eine immunologische Kontrolle ohne vorhandenes Anti-HBc meist Parameter für den Impfschutz. Beginnende Immunität nach einer Impfung liegt bei einem Messwert von >10 IU/ml vor.> 100 U/ml => Impfschutz vorhanden
< 100 U/ml => Auffrischung empfohlen |
| Durchführung: |
wöchentlich |
HBs-Antigen* (qualitativ)*
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Akute oder chronische HBV-Infektion, Mutterschaftsvorsorge |
| Erregermeldung: |
Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis eines Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet |
| Inkubationszeit: |
Nachweis etwa 1-10 Wochen nach Übertragung. Frühester diagnostischer Marker |
| Hinweis: |
Bei Persistenz > 6 Monate liegt eine chronische Infektion vor Der Verlust von HBs-Antigen spricht in Verbindung mit dem Auftreten von HBs- AK für eine ausgeheilte (immunologisch kontrollierte) Infektion.
Zur Beurteilung der Virusaktivität sowie hinsichtlich der Therapieindikation ist die Untersuchung auf HBV-DNA zu empfehlen. 5-10 % der HBV-Infektionen sind HBs-Antigen negativ! |
| Durchführung: |
wöchentlich(*) |
HBe-Antigen*
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
Infektionsstatus bei HBV-Infektion, Verlaufskontrolle bei HBV-Infektion, Therapiemonitoring, Therapieprognose |
| Inkubationszeit: |
Nachweis etwa 1-10 Wochen nach Übertragung. |
| Hinweis: |
HBe-Antigen weist in der Regel auf eine hohe Virusreplikation hin.
Fehlendes HBe-Antigen schließt jedoch eine hohe Replikationsrate nicht aus (Präcore-Mutation).
Achtung: Bei Infektion mit seltenen HBV-Escape-Mutanten kann kein HBe-Antigen nachgewiesen werden. |
| Durchführung: |
wöchentlich(*) |
HBV Viruslastbestimmung (quantitative HBV-PCR)
| Methode: |
quantitative Real-time PCR |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma. Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren |
| Referenzbereich: |
negativ
|
| Messbereich: |
10 – 1.000.000.000 IU/ml |
| Indikation: |
Differentialdiagnose akute oder ausgeheilte Hepatitis B; Therapiemarker |
| Erregermeldung: |
Dem Gesundheitsamt wird gemäß §7 Abs.1Nr.20IfSG der direkte oder indirekte Nachweis von Hepatitis-B-Virus, soweit er auf eine akute Infektion hinweist, namentlich gemeldet. Diagnosemeldung erfolgt durch den behandelnden Arzt. |
| Behandlungsziel: |
Serokonversion oder langanhaltende Suppression der Viruslast. |
| Hinweis: |
Viruslastbestimmung: bei positivem Antikörpernachweis, vor Beginn einer Therapie, 4 und 12 Wochen nach Therapiebeginn und anschließend in 3 Monatsabständen bis zur etwaigen langanhaltenden Serokonversion. |
| Durchführung: |
wöchentlich |
HBV genotypische Resistenzbestimmung
| Methode: |
PCR, Sequenzierung nach Sanger |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma.
Minimale Viruslast: 300 HBV-DNA IU/ml.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren. |
| Genbereich: |
Polymerase |
| Indikation: |
Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 10 IU/ml |
| Hinweis: |
Anforderung: nach Therapieversagen, bei Verdacht auf primärresistenten Viren. Die genotypische Resistenzbestimmung bei HBV ist zurzeit keine GKV-Leistung. Antrag auf Kostenübernahme bei der KK erforderlich! |
| Durchführung: |
auf Anfrage |
HBV Genotypisierung
| Methode: |
Realtime PCR |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma.
Minimale Viruslast: 300 HBV-DNA IU/ml.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT. Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden. EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren. |
| Messbereich: |
Polymerasegen |
| Indikation: |
Bestimmung des Genotyp von Hepatitis B (A, B,C, D, … |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Suppression der Viruslast, Serokonversion |
| Hinweis: |
Anforderung: vor Therapiebeginn (insbesondere mit Interferon).
Die Genotypisierung bei HBV ist zurzeit keine GKV-Leistung.
Antrag auf Kostenübernahme bei der KK erforderlich! |
| Durchführung: |
auf Anfrage |
HEPATITIS D VIRUS:
HDV-Antikörper (Anti HDV)*
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
bei jeder Hepatitis-B-Neudiagnose, bei bisher fehlender Testung bei bekannter HBV-Infektion sowie bei Exazerbation einer chronischen Hepatitis B.
Verdacht auf eine Infektion mit Hepatitis D |
| Erregermeldung: |
namentliche Labor-Meldepflicht gem. IfSG bei direktem und indirektem Erregernachweis! |
| Hinweis: |
Beim Hepatitis-D-Virus handelt es sich um ein defektes Virus: Für die Produktion infektiöser Viruspartikel ist das Hepatitis-B-Virus-Hüllprotein (HBs-Antigen) erforderlich, so dass eine HDV-Infektion ausschließlich in Verbindung mit einer HBV-Infektion vorkommt. Ein positiver Anti-HDV-Antikörper Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (Direktnachweis über HDV-RNA) überprüft werden.
Der direkte Erregernachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen aktiver und ausgeheilter HDV-Infektion.
Bei negativem Virusnachweis sollte gegebenenfalls die Untersuchung im Abstand von 3-6 Monaten untersucht werden. |
| Durchführung: |
wöchentlich(*) |
HEPATITIS C VIRUS:
HCV-Antikörper Nachweis
| Methode: |
ECLIA (ElectroChemiLumineszenzImmunoAssay) |
| Material: |
1 ml Serum (Lagerung bis zur Abholung bei 4°C) |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Indikation: |
akute, chronische oder früher abgelaufene Infektion |
| Erregermeldung: |
Positive bestätigte Erstbefunde werden durch das Untersuchungslabor an das zuständige Gesundheitsamt gemeldet. |
| Inkubationszeit: |
HCV-Antikörper werden in der Regel 6 – 9 Wochen, in seltenen Fällen erst 6 Monaten nach der Infektion nachweisbar. |
| Hinweis: |
Ein positiver Befund muss immer durch einen Bestätigungstest (Direktnachweis über HCV-RNA) überprüft werden. Der direkte Erregernachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen aktiver und ausgeheilter HCV-Infektion. Bei negativem Virusnachweis sollte gegebenenfalls die Untersuchung im Abstand von 3-6 Monaten untersucht werden. Der Ausschluss einer vertikalen Transmission erfolgt mittels HCV-PCR. |
| Durchführung: |
2-3 wöchentlich |
HCV Viruslastbestimmung (quantitative HCV-PCR)
| Methode: |
quantitative Real-time PCR |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut, Lagerung bei RT.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma zentrifugieren und einfrieren. |
| Referenzbereich: |
negativ |
| Messbereich: |
12 – 100.000.000 IU/ml (Umrechnungsfaktor: 1 IU ≈ 2,6 Kopien/ml) |
| Indikation: |
Differentialdiagnose akute oder ausgeheilte Hepatitis C; aktive HCV, Therapiemarker, neonatale Infektion |
| Erregermeldung: |
namentliche Meldung durch das Labor an das Gesundheitsamt, wenn keine chronische Infektion bekannt ist.
Die Diagnosemeldung erfolgt durch den behandelnden Arzt. |
| Inkubationszeit: |
HCV-RNA lässt sich in der Regel 4 Wochen nach dem Infektionsrisiko nachweisen. |
| Hinweis: |
Behandlungsziel: keine nachweisbare HCV-RNA (Eradikation). Deshalb sollte die HCV RNA Quantifikation vor Therapiebeginn, unter Therapie und bei Therapieende durchgeführt werden. Von einer Heilung ist auszugehen, wenn drei Monate nach Therapieende keine HCV-RNA mehr nachweisbar ist. Bei serologischem Nachweis einer HCV-Infektion und negativer HCV-PCR sollte aufgrund der Möglichkeit einer diskontinuierlichen Replikationsaktivität eine Kontrolluntersuchung nach 6-12 Monaten durchgeführt werden. |
| Durchführung: |
täglich |
HCV Genotypisierung
| Methode: |
UDS |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3ml EDTA-Plasma.
Nachweisbare Viruslast!
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren. |
| Messbereich: |
5’UT |
| Indikation: |
Bestimmung des Genotyp von Hepatitis C (1a, 1b, 2, 3, 4, 5, 6) |
| Behandlungsziel: |
Heilung. Die HCV-Geno-typisierung spielt eine wichtige Rolle bei der Therapieplanung (Therapiedesign, Therapiedauer). |
| Hinweis: |
Anforderung: vor Therapiebeginn. Bei Verdacht auf Reinfektion. |
| Durchführung: |
wöchentlich |
HCV genotypische Resistenzbestimmung
| Methode: |
PCR, Sequenzierung nach Sanger |
| Material: |
7 ml EDTA-Blut oder 3 ml EDTA-Plasma.
Minimale Viruslast: 100 HCV-RNA IU/ml.
Separate Röhrchen nur für diese Bestimmung. |
| Präanalytik: |
EDTA-Blut: Lagerung bei RT.
Abholung am Tag der Blutentnahme, spätestens binnen 24 Stunden.
EDTA-Plasma: zentrifugieren und einfrieren . |
| Genbereich: |
NS3A4, NS5A, NS5B |
| Indikation: |
Detektion resistenzrelevanter Mutationen zur Therapieoptimierung |
| Behandlungsziel: |
Langanhaltende Senkung der Viruslast unter die Nachweisgrenze von 12 IU/ml mit Ausheilung. |
| Anforderung: |
Nach Therapieversagen; bei Verdacht auf primärresistente Viren; mit speziellem Anforderungsschein.
Die genotypische Resistenzbestimmung bei HCV ist zurzeit keine GKV-Leistung |
| Durchführung: |
auf Anfrage |
Informationen zu anderen Parametern erhalten Sie auf Anfrage
(info@labor-knechten.de)
HLAB5701*
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* Duchführung im Partnerlabor
